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【試劑盒簡介】

????? 豬偽狂犬病毒PCR 檢測試劑盒，采用聚合酶鏈反應（PCR ）技術檢測豬血清和組織中的PRV，適用于PRV的檢測、診斷和流行病學調查。

【原理】

????? 提取DNA作為模板，在DNA 聚合酶的作用下，經高溫變性、低溫退火和中溫延伸的多次循環，使特異DNA 片段的拷貝數放大數百萬倍。將擴增的DNA 片段進行電泳、染色后，在紫外燈下，肉眼可見DNA 片段的擴增帶。

【試劑盒組份】

注：塑料袋內試劑（陽性對照、蛋白酶K、PCR反應液A和B）-20?℃凍存，其他室溫保存。

【操作方法】

一、樣品制備

1樣品采集：病死或撲殺的豬，取大腦海馬背側皮層、中腦、腦橋、扁桃體、淋巴結等組織；待檢活豬，用棉拭子取鼻腔分泌物，置于50%甘油生理鹽水中，或用注射器取血5 mL，2～8 ℃保存。（要求送檢病料新鮮，嚴禁反復凍融。）

2樣品處理：

2.1 組織樣品的處理：稱取組織0.1g于研磨器中磨碎，再加1mL生理鹽水繼續磨至無塊狀物；然后將樣品轉至1.5 mL滅菌離心管中，8000 rpm離心5 min，取上清100 μL于1.5 mL 滅菌離心管中，加入500 μL裂解液和10 μL蛋白酶K，混勻后37℃溫育1h。

2.2 全血樣品的處理：待血凝后取血清放于離心管中，8000 rpm離心5 min，取上清100 μL于1.5 mL 滅菌離心管中，加入500 μL裂解液和10 μL蛋白酶K，混勻后37℃溫育1h。

2.3 陽性對照的處理： 混勻后取100 μL于1.5 mL 滅菌離心管中，加入500 μL裂解液和10 μL蛋白酶K，混勻后37℃溫育1h。

2.4 陰性對照的處理： 混勻后取100 μL于1.5 mL 滅菌離心管中，加入500 μL裂解液和10 μL蛋白酶K，混勻后37℃溫育1h。

二、病毒DNA的提取

1. 取出已處理的樣品、陰性對照和陽性對照，分別加入600μL抽提液（用抽提液之前不要晃動，不要吸到上層保護液），用力顛倒10次混勻，12,000 rpm 離心10min。

2. 取500μL上清置于滅菌離心管中，加入500μL異丙醇，混勻，置液氮中3min或-70℃冰箱中30min。取出樣品管，室溫融化，13,000 rpm 離心15min。

3. 棄上清，沿管壁緩緩加入1mL 洗滌液，輕輕旋轉一周后倒掉，將離心管倒扣于吸水紙上1min，再將離心管真空抽干15min或37℃烘干。

4. 用30μL無菌水溶解沉淀，作為模板備用。

三、PCR

1. 反應體系：分別取16μL PCR反應液A（用前混勻）、2μL PCR反應液B（用前混勻）和2μL模板DNA，混勻。

2. 反應程序：在PCR儀上運行以下程序： 94 ℃ 3 min ；94 ℃ 30 s 、55℃ 30 s 、72 ℃ 30 s，35個循環；72 ℃延伸10 min。

四、電泳

1. 制膠：用50倍稀釋的TAE電泳緩沖液配制1%瓊脂糖凝膠。

2. 電泳：待膠凝固后，取5μL PCR擴增產物點樣于瓊脂糖凝膠孔中，以5V/cm的電壓于50 倍稀釋的TAE 電泳緩沖液中電泳。

3. 染色：取50 倍稀釋的TAE 電泳緩沖液30mL，加入10μL染色液，混勻后將膠浸泡30min，于紫外燈下觀察結果。

【結果判斷】

????? 陽性對照出現400bp擴增帶，陰性對照無帶出現（引物帶除外）時，實驗結果成立。被檢樣品出現400bp擴增帶為豬偽狂犬病毒陽性，否則為陰性。

【需用但未提供的材料】

????? 組織研磨器、眼科剪、眼科鑷、一次性注射器、瓊脂糖、滅菌1.5mL 離心管和吸頭（10 μL、200 μL、1000 μL）。

【注意事項】

1．本試劑盒有效期為6個月，不要使用超過有效期限的試劑，試劑盒之間的組分不要混用。

2．所有試劑應在規定的溫度儲存，使用時拿到室溫下，使用后立即放回。

3．注意防止試劑盒組分受污染。使用前將塑料袋內試劑瞬離15s，使液體全部沉于管底，放于冰盒中，吸取液體時移液器吸頭盡量在液體表面層吸取。

4．嚴格按試劑盒說明書操作可以獲得最好的結果。操作過程中移液、定時等全部過程必須精確。

5．所有接觸病料的物品均應合理處理，以免污染實驗室。

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